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PCR扩增过程

285450614 2013-01-16 05:39:36 410  浏览
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全部评论(2条)

  • 祎祎1208 2013-01-17 00:00:00
    目的基因受热变性后解链为单链,引物与单链相应互补序列结合,然后在DNA聚合酶的作用下进行延伸,如此重复

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  • yangshao327 2013-01-17 00:00:00
    ①首先是将含有待扩增DNA样品的反应混合物放置在高温(>91℃)环境下加热1分钟,使双链DNA变性,形成单链模板DNA; ②降低反应温度(约50℃),致冷1分钟,使寡核苷酸引物与两条单链模板DNA发生退火作用并结合在靶DNA区段两端的互补序列位置上; ③将反应混合物的温度上升到72左右保温1-数分钟,在DNA聚合酶的作用下,从引物的3'-端加入脱氧核苷三磷酸,并沿着模板分子按5'→3'方向延伸,合成新生DNA互补链④重复以上操作

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PCR扩增过程
 
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PCR扩增效率的评估

做过PCR的小伙伴都知道,PCR前期的验证引物探针性能和确定最适反应条件是确保正式实验顺利进行的前提。PCR实验中有个相当重要的工作——即是PCR扩增效率的评估。扩增效率是PCR检测性能最重要的指标之一,也是定量分析计算结果时所需要的参数。接下来,让小编给大家细细说来吧。

什么是扩增效率

PCR是一种DNA体外扩增技术,通常包括了30 - 50个循环周期。每个循环中,目标DNA分子的拷贝数最多会增加1倍。但在实际反应中,1个DNA分子在1个扩增循环后被成功复制的概率,也就是扩增效率E<1。而PCR的特点是反应初期目标DNA分子呈现指数增长,这个阶段的扩增效率可以无限接近于1;随后由于反应组分消耗或聚合酶活性下降或两者共同作用,导致反应效率逐渐下降并ZZ停止。不管是定量DNA分子初始量,还是计算表达量差异,都需要精确评估PCR扩增效率。

如何评估扩增效率

标准曲线是评估PCR扩增效率最可靠和稳定的一种方法,被研究者们广泛认可。该方法涉及到制作一系列的样品来控制目标模板的相对数量。这些样品通常由浓缩的原液连续稀释而成,最常用的是10倍稀释。使用一系列稀释样品,采用标准qPCR程序进行扩增获得Cq值,ZH根据各样品浓度及相应的Cq值绘制标准曲线,得到线性方程Cq= -klgX0+b,扩增效率E=10(-1/k)-1。利用qPCR进行定量分析时,要求扩增效率范围在90%-110%(3.6>k>3.1)。



影响扩增效率的关键因素

PCR的效率取决于许多因素,包括以下方面:

1)检测的性能。这取决于引物、模板的序列和结构。二级结构和分子间的相互作用都会降低PCR效率。

2)样品基质。其中可能含有来自样品的YZ剂和其他干扰物质,或携带来自上游加工步骤的试剂。检测样品是否有YZ作用,可使用RNA或DNA Spikes方法进行检测,或者通过倍比稀释得到标准曲线也可以观察到。

3)所用试剂及其浓度。本质上,任何PCR试剂都会一定程度上限制PCR反应速率和性能。

4)竞争性反应。多重反应时,各基因的扩增存在反应成分的竞争。

5)qPCR仪器。由于仪器特定的硬件/软件属性和设置、以及用于提取Cq值的特定算法不同,相同的实验中,不同的仪器会产生不同的PCR效率。

6)技术重复。一般进行3次以上的技术重复以校正实验误差,重复数越多精确度越高。

7)连续稀释中的移液体积。移液体积越大,移液器误差或操作误差引起的影响越小。

qPCR扩增效率的判断

qPCR扩增效率主要是通过标准曲线的线性关系方程Cq=-klgX0+b来判断,扩增效率E在90%-110%之间时,认为扩增接近理想情况;参数R2要求≥0.98,R2越接近1,则说明Cq和X0的Log值之间的相关性越高。

那么扩增效率E表现不好,主要分为两种情况:

1)过低的扩增效率(<90%)

可能存在的原因:

☑ 移液器校准不良或移液技术差。

☑ 不正确的稀释导致标准曲线出现错误。

☑ 染料浓度低荧光或者仪器未校准染料。

☑ 引物设计不好或扩增子具有二级结构。

☑ 标准曲线动态范围太小。

☑ Taq酶无活性或活性降低。

☑ 样品YZ。

2)过高的扩增效率(> 110%)

可能存在的原因:

☑ 移液器校准不良或移液技术差。

☑ 不正确的稀释导致标准曲线出现错误。

☑ 引物二聚体或非特异性扩增。

☑ 标准曲线动态范围太小。

☑ 基因组DNA污染(仅限RNA模板未进行DNase I处理或DNase I消化不完全)。


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PCR简介

聚合酶链反应(polymerase chain reaction,PCR)是利用一段DNA为模板,在DNA聚合酶和核苷酸底物共同参与下,将该段DNA扩增至足够数量,以便进行结构和功能分析的一种反应。

PCR扩增原理

核酸降解是DNA/RNA分子中的碱基和戊糖间的氮糖苷键,或磷酸二酯键在物理因素、化学因素和生物因素等作用下发生水解,使DNA/RNA链发生断裂。

▲ 图一:PCR原理反应示意图

▲ 图二:PCR反应过程中温度变化图

实时荧光定量PCR原理

通过荧光染料或荧光标记的特异性探针,对PCR产物进行标记跟踪,实时监控反应过程,结合相应软件可以对结果进行分析,通过标准曲线对未知模板进行定量分析,计算待测样本的初始模板浓度。

▶  初始DNA浓度越高,荧光达到某一值(阈值)时所需要的循环数越少(Cq值)。

▶  Log浓度与循环数成线性关系,根据样品扩增到阈值的循环数与已知起始拷贝数的标准品作出的标准曲线对比就可以计算出该样品的起始拷贝数。

影响PCR扩增的因素

▶  模板间的交叉污染。

▶  PCR试剂的污染。

▶  PCR产物的污染。

防止污染的预防操作

❶ 永远要设置NTC(No Template Control)对照,一个不含有模板DNA但含有PCR体系中所有其他成分的对照。如果不能发现,会导致后续一系列的数据无法使用。

❷ 准备PCR体系的移液器要专用,千万不能用吸取过PCR产物的移液器去准备PCR体系。

❸ 打开离心管前先离心,开管动作要轻,以防管内液体溅出。

❹ 在加完其他反应成分再加入模板。

❺ 实验结束后及时清理台面。

出现污染后的解决办法

❶ 更换试剂:更换新的试剂和水,用确保无污染的移液器分装备用。

❷ 清洁所有可能的污染源:实验台面,离心机,门把手等。

❸ 实验过程更加小心,采用前面提到的各种防止污染的方法。


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