水生生物调查方法
2.2.1 水生生物采集范围
（1）浮游植物的调查包括定性、定量调查。浮游植物色素的测定可作为生物量的重要指标。通过一定的换算，也可作为生产量的指标。测定叶绿素的方法可分为分光光度法和荧光光度法。在提取液、操作步骤、计算公式等方面也有所不同，较常用的是罗伦森（Lorenzen）的单色分光光度法。
（2）浮游动物调查主要针对四大类——原生动物、轮虫、枝角类和桡足类进行。他们的种群及数量变化可反映水体富营养化程度。
（3）底栖生物调查主要包括对生活在江河湖海底部的动植物群落结构的调查、底栖生物按生活方式可分为营固着生活型、底埋生活型、水滴爬行型、钻蚀生活型、底层游泳型等，如落泪、蛇等爬行的种类。
（4）大型水生植物主要指水生维管束植物，大型藻类、蕨类等。
（5）水体微生物能够反映水体受污染的程度和水体营养水平状况。指示菌如大肠菌群、粪大肠菌群、粪链球菌、产气荚膜梭菌、双歧杆菌、肠道病毒、大肠杆菌噬菌体、沙门氏菌数、志贺氏菌属、铜绿假单胞菌、葡萄球菌属、副溶血弧菌等。
2.2.2 水生生物的采集、处理与固定
1.浮游植物
采样时，定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水1L。泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。大型浮游植物的定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1%-1.5%。需要保存并带回的样本需加入37%-40%甲醛溶液。用量为水样体积的4%。
2.浮游动物
当采样时，原生动物、轮虫和无节幼体定量采样可使用采集的浮游植物的定量样品，如单独采集取水量以1L为宜。定性样品采集方法同浮游植物。枝角类和桡足类动物定量样品应在定性采样之前用采水器采集，每个采样点财税杨10-50L，在用25号浮游生物网过滤浓缩，过滤无放入标本瓶中，并用滤出水冲洗过滤网3次，所得过滤物也放入上述瓶中；定性样品用13号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集。注意过滤网和定性样品采集网要分开使用。原生动物和轮虫的定性样品，除留一瓶供活体观察不固定外，固定方法同浮游植物的方法。枝角类和桡足类动物的定量、定性样品应立即用37%-40%甲醛溶液固定，用量为水样体积的5%。
3.底栖动物
采样可分为定量采样和定性采样两类。定量采样，螺、蚌等较大型底栖动物，一般用带网夹泥器采集。采得泥样后应将网口闭紧，放在水中涤荡，清除网中泥沙，然后提出水面，拣出其中全部螺、蚌等底栖动物。水生昆虫、水栖寡毛类和小型软体动物。用改良彼得生式采泥器采集。将采得的泥样全部倒入塑料桶或盆内，将40目、60目分样筛筛洗后，拣出筛上可见的全部动物。如从采样到分拣超过2h，则应在袋中加入适量固定液。塑料袋中的泥样逐次倒入白色解剖盘中，加适量清水，用吸管、小镊子、解剖针等分拣。如带回的样品不能及时分拣，可置于4℃低温保存。各采样点上，用上述两种采样器各采集2-3次样品。医用75%乙醇溶液保存软体动物，4-5d后再换一次乙醇溶液。也可用5%甲醛溶液固定，但要加入少量苏打或硼砂中和酸性甲醛。还可去内脏后保存空壳。可用5%乙醇溶液固定水生昆虫，5-6h后移入75%乙醇溶液保存，对于水栖寡毛类动物，应先放入培养皿中，加少量清水，缓缓滴加数滴75%乙醇溶液将虫体麻醉，待其完全舒展伸直后，再用5%甲醛溶液固定。75%乙醇溶液保存。
4.着生生物
调查时只进行定性检查。主要刮去或玻璃水中的浸没物，例如石块、木桩、树枝、水草或硬底泥等表层藻膜、丝状藻和粘稠状生长无。着生生物采样时，若水体中有大量大型水生植物分布，则采集整株水生植物带回。在室内从植物根部起，依次刮去植物上的所有着生生物，除此之外，水滴石块、木桩、树枝等基质上的着生生物可用刀片或硬刷刮到盛有蒸馏水的样品瓶中，在将基质带回室内刮取。着生藻类样品的处理采用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1%-1.5%。着生原生动物样品连同基质分别放入盛有采样点水样的广口瓶内，其中一瓶用鲁哥氏液固定。另一瓶补加固定液，供活体观察用。
5.大型水生植物
观察采样点内大型水生植物的长势情况。在其中选择密集区、一般区和稀疏区，布设采样断面。采样断面应平行排列，亦可为“之”字形。挺水植物一般用1㎡采样方框采集。采集时，将方框中全部水草从基部割去。采集时，将水草夹张开，插入水底，然后用力加紧，吧方框内的全部植物连根带泥夹起，冲洗去污泥，将网内水草洗净装入编号的水草袋内。每个采样点采集两个平行样品。除去污泥等杂质，装入样品袋内，沉水植物需放入盛水的容器中。在大型水生植物的定心采样中，挺水植物用手采集；浮叶植物和沉水植物用水草采集耙采集；漂浮植物直接用手或带柄手抄网采集。
