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荧光显微镜检测。细胞悬液怎么做?我要做贴壁细胞 用胰酶消化?

卢南华爱张燕菁    2011-04-02    荧光显微镜    浏览 544 次

荧光显微镜检测。细胞悬液怎么做?我要做贴壁细胞用胰酶消化?... 荧光显微镜检测。细胞悬液怎么做?我要做贴壁细胞 用胰酶消化?

精彩问答
鹊下乒北佳F 发布日期:2011-04-03
博凌科为解答:1.贴壁细胞 ,让细胞自己在盖玻片上爬片。操作如下:A. 取普通洁净盖玻片于70%乙醇中浸泡5分钟或更长时间,无菌超净台内吹干或用细胞培养PBS或0.9%NaCl等溶液洗涤三遍,再用细胞培养液洗涤一遍。 将盖玻片置于六孔板内,种入细胞培养过夜,使约为50%-80%满。B. 刺激细胞发生凋亡后,吸尽培养液,加入0.5ml固定液,固定10分钟或更长时间(可4℃过夜)。C. 去固定液,用PBS或0.9%NaCl洗两遍,每次3分钟,吸尽液体。洗涤时宜用摇床,或手动晃动数次。D. 加入0.5ml Hoechst 33258染色液,染色5分钟。也宜用摇床,或手动晃动数次。E. 用PBS或0.9%NaCl洗两遍,每次3分钟。F. 滴一滴抗荧光淬灭封片液于载玻片上,盖上贴有细胞的盖玻片,尽量避免气泡。使细胞接触封片液,切勿弄反。G. 荧光显微镜可检测到呈蓝色的细胞核。2. 悬浮细胞A. 离心收集细胞样品于1.5ml离心管内,加入0.5ml固定液,缓缓悬起细胞,固定10分钟或更长时间(可4℃过夜)。B. 离心去固定液,用PBS或0.9%NaCl洗两遍,每次3分钟。洗涤期间手动晃动。C. Z后一次离心后吸去大部分液体保留约50ml液体,再缓缓悬起细胞,滴加至载玻片上,尽量使细胞分布均匀。D. 稍晾干,使细胞贴在载玻片上不易随液体流动。E. 均匀滴上0.5ml Hoechst 33258染色液,染色5分钟。用吸水纸从边缘吸去液体,微晾干。F. 用PBS或0.9%NaCl洗两遍,每次3分钟。G. 滴一滴抗荧光淬灭封片液于载玻片上,盖上一洁净的盖玻片,尽量避免气泡。H. 荧光显微镜可检测到呈蓝色的细胞核。3. 组织切片A. 常规包埋切片后,脱腊,透明。B. PBS或0.9%NaCl洗两遍,每次3分钟,吸尽液体。洗涤时宜用摇床,或手动晃动数次。可在六孔板中操作。C. 加入0.5ml Hoechst 33258染色液,染色5分钟。也宜用摇床,或手动晃动。D. 用PBS或0.9%NaCl洗两遍,每次3分钟。E. 将切片置于载玻片上,滴一滴抗淬灭封片液,盖上一洁净的盖玻片,尽量避免气泡。F. 荧光显微镜可检测到呈蓝色的细胞核。
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