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求助:未分化PC12细胞,诱导不分化

xukangbin88 2017-06-15 00:45:58 452  浏览
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全部评论(1条)

  • 伊w尛雅 2017-06-16 00:00:00
    未分化PC12细胞,诱导不分化 由于它们所用的培养基不同,培养是所要求的条件不同所以在批量生产我们所需的目的产物时就要选择相应的生物反应器。在选择生物反应器时要注意到生物反应器在生物反应过程的剪切力、传质问题如气-液质量传递和液-固质量传递。生物反应器是利用生物催化剂为细胞培养(或发酵)或酶反应提供良好的反应环境的设备,通常称为发酵罐或酶反应器。用于污水生物处理的曝气池或厌气消化罐也可作为生物反应器的一类。生物反应器是生物反应过程中的关键设备,它的结构、操作方式和操作条件对生物技术产品的质量、转化率和能耗有着密切关系。现在就三种生物反应器进行说明。

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Milo:心肌细胞分化追踪,干细胞ZL质控利器

       心脏一旦受损,几乎无法再生,这意味着心脏严重缺乏心肌细胞的更新,导致心脏功能的下降,进而引发心力衰竭(HF)等疾病。在这种情况下,可采用心脏移植的方式对患者进行ZL。但供体心脏的短缺严重阻碍了这一ZL的进程,同时也给国家卫生机构带来了经济负担。为了解决这个问题,需要开发新的替代方法作为潜在的ZL方案。


       源自人类诱导的多能干细胞(hiPSC)的心肌细胞(CM),为ZL和建模心血管疾病(CVD)提供了一种新颖而有前途的再生策略。基于Yamanaka等科学家的开创性工作,研究人员现在可以从各种来源生成hiPSC,然后将hiPSC分化为心肌细胞1,2。但是与天然(体内)成人CM相比,实验室培养的人诱导多能干细胞衍生的心肌细胞(hiPSC-CM)的成熟状态,分子表达谱和功能可能有所不同,从而限制了其实用性和一致性。为了充分发挥其再生ZL的潜力,必须对hiPSC-CM培养物进行严格表征3。


       单细胞谱分析技术可以对hiPSC-CM的异质性进行准确的分析。基于Milo™Single-Cell Western,具有区分细胞间蛋白质表达和细胞身份差异的分辨能力,可以表征细胞标志物的异质性,同时可以监控hiPSC细胞分化为CM细胞的分化过程,并对Z终心肌细胞进行质量检测。


技术流程

hiPSC细胞分化为心肌细胞

Milo操作流程

       将细胞悬浮液加载到scWest芯片上,这样单个细胞就可以安放在芯片上的各个微孔中。然后Milo裂解细胞,产生单细胞裂解物,通过分子量电泳分离每个单细胞裂解物中的蛋白质,然后使用紫外线在scWest芯片中捕获蛋白质。然后,对目标蛋白进行一级抗体和荧光二级抗体进行免疫荧光捕获。通过使用开放格式的微阵列扫描仪对芯片进行成像,并使用Scout™软件对图像进行分析,以进行定量的自动数据分析。


实验结果

鉴定hiPSC细胞

监测心肌细胞的分化(第0天,第21天)

监测分化为不同细胞表型(心房和心室)的比例

结论:

       hiPSC-CM在基础和转化心脏研究中的应用,可以更好地了解心血管疾病,以及发现和开发心血管疾病的ZL药物。然而,大量样品的分析不能提供足够的分辨率,来表征诱导多能干细胞或hiPSC-CM细胞亚群的分子异质性,以及hiPSC-CM成熟过程中蛋白质表达的波动。


       ProteinSimple Milo™的Single-Cell Western,可以实现单细胞蛋白表达的分辨率分析,从而确定细胞亚群的异质性。在这项研究中,展示了Milo™对hiPSC和hiPSC-CM样本进行单细胞谱分析的能力,以及跟踪细胞分化表型的能力。且这项技术将提高心肌细胞生产的一致性,并加速开发强大的干细胞疗法。


参考文献:

1.Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblasts cultures by defined factors, K Takahashi and S Yamanaka, Cell, 2006; 126:663.

2.Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors, K Takahashi, K Tanabe, M Ohnuki, M Narita, T Ichisaka, K Tomoda, and S Yamanaka, Cell, 2007: Cell 131:861.

3.Defining human cardiac transcription factor hierarchies using integrated single-cell heterogeneity analysis, JM Churko, P Garg, B Treutlein, M Venkatasubramanian, H Wu, J Lee, QN Wessells, SY Chen, WY Chen, K Chetal, G Mantalas, N Neff, E Jabart, A Sharma, GP Nolan, N Salomonis, and JC Wu, Nat. Commun., 2018; 9:4906.

4.Cardiomyocyte differentiation of pluripotent stem cells and their use as cardiac disease models, C Dambrot, R Passier, D Atsma, CL Mummery, Biochem J, 2011: 434:25.

5.Cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells in pro-survival factors enhance function of infarcted rat hearts. MA Laflamme, KY Chen, AV Naumova, V Muskheli, JA Fugate, SK Dupras, H Reinecke, C Xu, M Hassanipour, S Police, C O’Sullivan, L Collins, Y Chen, E Minami, EA Gill, S Ueno, C Yuan, J Gold, CE Murry, Nat. Biotech, 2007; 25:1015.

6.Characterization and enrichment of cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells. C Xu C, S Police, N Rao, MK Carpenter, Circ. Res., 2002; 91:501.



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