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怎么制作生物模型啊!

vgjcggfd 2010-07-25 04:14:30 302  浏览
  • 暑假的生物探究作业,说是要考虑保存性~那么就别提橡皮泥了,要做的就是初一生物课本(人教版)涉及到的所有模型,血液循环啊、细胞啊、肾、心脏啊……怎么做啊,非要那塑料吗?... 暑假的生物探究作业,说是要考虑保存性~ 那么就别提橡皮泥了,要做的就是初一生物课本(人教版)涉及到的所有模型,血液循环啊、细胞啊、肾、心脏啊…… 怎么做啊,非要那塑料吗? 展开

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全部评论(4条)

  • 2410113267 2010-07-26 00:00:00
    建议做肺部吸气呼气的那个模型,用塑料瓶子,洗耳球,薄膜等,比较简单易做。细胞的模型我们有个同学尝SY蜡来做,涂上水粉颜料,效果不错。

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  • kigiki 2010-07-26 00:00:00
    橡皮泥可以啊~~~做好放在冰箱里面就ok~~~或者快开学的时候做

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  • 巧依心 2010-07-26 00:00:00
    这个啊,随便做个样子就可以了,比如说做心脏你不能做个足球出来,其余的位置摆对了,其间的关系你反映出来了就可以了

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  • 谈定的胃 2018-04-22 00:00:00
    如果考虑到保存性,可以用塑料薄膜加支撑骨架来做,骨架可以考虑铁丝或者钢丝之类的东西,也可以用牙签,加上一点点粘合剂就可以了。如果是做血液循环的难度应该比较大,因为循环系统涉及到的器官比较多,光是血管就够你做的了。如果你想得高分或者获得老师比较好的评价可以做。如果只是为了应付老师,建议做简单模型。比如细胞的就很好,心脏也可以考虑。心脏可以用废的篮球或者足球,切成两半后,里面用胶或者针线牵拉做出心脏的形状,Z好考虑纵剖结构,把多余的边角废料做成心室和心房。瓣膜结构可以考虑橡皮膜,血管可以考虑用橡胶管。经过粘接组合,刷上或者图上颜色就可以了。 希望可以帮到你

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//三血管阻塞模型


急性脑缺血动物模型是研究脑血管病病理机制和FZ措施不可缺少的工具。由于临床上缺血性卒中大多是由于大脑中动脉区域梗死造成,因此人们普通采用血管内线栓法模型,但是由于该模型制作变异性大,而且动物长期存活率低,致使实验重复性差。


后来经过学者们不断的摸索优化,发明了开颅后夹闭大脑中动脉(而非电凝)联合双侧颈总动脉夹闭的大鼠三血管阻塞模型(3-vessel occlusion, 3-VO) ,由于该方法可同时导致大鼠皮质和基底节缺血,被认为是最接近人类卒中的标准动物模型,适用于脑缺血后长期神经功能缺失的康复及介入ZL研究中。另外,该模型因其缺血较为迅速、缺血效果好、再灌注血流恢复迅速而更加适用于急性缺血性疾病的研究。

//动物选择


•小鼠:C57BL6J  CD-1等小鼠,常用雄性小鼠,体重25-35g

•大鼠:Sprague-Dawley(SD)、Wistar等多种小鼠,常用雄性大鼠,体重250~350g



//制作步骤


1.大鼠手术操作步骤


•将大鼠置于手术台上,取仰卧位,用10m注射器大小的管子放置在大鼠颈后,以加强双侧颈总动脉的显露。

(1)剃掉颈部和腹侧的毛,用75%的乙醇棉球或聚维酮碘进行局部皮肤消毒,颈部中线做一个切口,分离双侧颈总动脉,双动脉下穿线;分离颈总动脉时小心分离伴行的迷走神经纤维,以免受损伤。

(3)将大鼠体位改为左侧卧位。

(4)在大鼠右眼滴加1~2滴人工泪液,闭上眼睑,避免手术中对眼睛造成损伤;剃掉右侧外耳道和右眼外之间的皮毛,使用聚维酮碘局部皮肤消毒,75%乙醇脱碘,在两个位置连线中点做一切口,长度约2cm。

(5)用止血钳拉开切口,切断颞肌,分离肌肉,暴露颧弓。操作工程中要注意保护腮腺和面神经。

(6)用咬骨钳移除颧弓,用牵张器撑开下颌骨与颧弓,暴露前庭窗;用1.4mm钻头的骨钻在前庭窗的前3mm、下1mm处钻孔,钻头浸在室温的盐水中,以免在钻洞过程中造成皮质热或物理损伤。在显微镜下透过硬脑膜即可看见大脑中动脉,垂直于嗅束向上走行。

(7)用针头挑破硬脑膜,分离大脑中动脉周围的蛛网膜,暴露大脑中动脉。用显微镊在接近嗅束处将大脑中动脉挑起,用无创微动脉夹夹闭或尼龙线结扎大脑中动脉,夹闭结扎位置在其分支豆纹动脉之前或靠近颈内动脉处。将颞肌和表面皮肤覆盖回位,用浸透人造脑脊液的纱布覆盖。

(8)在阻断大脑中动脉同时,通过尼龙线套扣阻断双侧颈总动脉的血流(见图1和图2)。

(9)缺血1~2h后颈总动脉的动脉瘤夹/缝线和大脑中动脉的缝线都被松开,在显微镜下直接观察3个动脉血流的恢复。

 (10)再灌注20min后,用牙科胶泥封闭颅骨手术,再分别缝合切口。允许大鼠麻醉苏醒后自由进食水。所有大鼠在能通风换气的(24±0.5)℃孵箱中直到实验结束。

图1三血管阻塞模型操作步骤

(a)  在左侧眼外眦至外耳道之间做长约2cm的切口;(b)暴露颞肌,纯性分离并牵开颞肌;(c)以卵圆窝或者下领神经前方3cm、侧方1cm的鳞骨为ZX,钻一直径为2~4mm的小孔;(d)移去颅骨;(e)暴露大脑中动脉区域;(f)剪开需扎闭区域周围硬脑膜,用10-0或11-0的带针缝合线结;大脑中动脉;(g)手术示意图;(h)结扎双侧颈总动脉。

图2三血管结扎示意图

注:双侧颈总动脉、右侧大脑中动脉结扎造成大脑中动脉区域持续、稳定的缺血

2.小鼠手术操作步骤

小鼠的手术操作流程与大鼠基本相同,不同之处是用更小的动静脉畸形血管夹。

//注意事项及常见问题解答

1.注意事项


•麻醉剂对梗死体积的作用

在麻醉和手术过程中对大脑缺血模型都是有影响的。麻醉剂在大脑缺血的病理生理中有重要作用。因此,笔者比较了不同麻醉剂对缺血梗死体积的影响,发现水合氯醛是这模型的理想麻醉剂。

水合氯醛是镇静剂,用于ZL失眠的短效药物,可缓解焦虑,在手术前诱导睡眠或ZL乙醇戒断症状,也可用于术后缓解疼痛。用水合氯醛比用其他的麻醉药(如氯 胺 酮、赛拉嗪、乙 醚和异氟醚)模型的梗死体积和结扎时间有更好的相关性。水合氯醛的另一优点在于不是管制药品,在购买和存放时减少了很多限制要求。

•血糖对梗死体积的影响

在临床研究中发现,血糖水平是缺血脑损伤一个主要的决定因素。三血管MCAO模型也证实血糖水平对缺血结果有重要影响。高血糖导致梗死体积明显增大,并且高血糖是缺血期间最有害的因素,反之低血糖则能减少梗死体积。在ZL窗内使血糖恢复正常能有效减少梗死体积。

然而,血糖对脑缺血作用的分子机制还不清楚。缺血前禁食24h能减少缺血24h后的脑损伤,这一作用持续至再灌注后28d。尽管COX-1基因ZL能在缺血24h后减少大脑梗死体积,但是在再灌注后的28d未见其持续的保护作用。这些结果均表明血糖对缺血脑损伤有重要作用,且是评价缺血的远期预后的一个重要因素。

•脑水肿对梗死体积的影响

在局灶性脑缺血的动物模型中,通过特殊组织染色观察每一个脑片的梗死部位,通常通过测量这些梗死面积来确定梗死体积。

形态学测定分析梗死体积是一个客观并且定量的评估缺血脑损伤程度的方法,同时这种方法在临床前的研究中常被用于判断神经保护剂的有效性。然而,肿胀的缺血组织可能导致测得的梗死区域增大,因此高估了实际的梗死体积。把脑水肿包括在梗死体积内计算可使实际的梗死体积增加多达22%。

因此,因脑水肿引起的梗死体积失真可能使得干预ZL的有效与否难以解释。可通过测量皮质的水含量和MRI确定在这一模型缺血损伤后的1~3d脑水肿的严重程度来减少因脑水肿导致的误差,Swanson等提出了一种基于正常存活的灰质体积来计算梗死体积的方法,这一方法进一步被林等证实。

显然,以前直接测量梗死体积的方法在缺血后前3d脑水肿进展期间所测得的数据要高于实际梗死体积,这一误差能通过基于对非梗死皮质体积的间接测量得以减少。

 

•性别对梗死体积的影响

流行病学研究发现,女性(直至绝经后,即55岁后)心血管病的患病率低于男性,卒中的发病率也是如此。有短暂性缺血发作或小卒中的女性发病率低于男性。动物研究也表明性别不同,卒中的结果不同。在三血管MCAO模型中,雄性比雌性大鼠的梗死体积更大。当在三血管MCAO模型中混有雄性和雌性大鼠时,应该考虑性别的影响。

•温度对梗死体积的影响

研究发现,即使是轻微的大脑温度降低,也能对缺血损伤的大脑起到保护作用。Connolly等的研究显示,MCAO模型后,小鼠无法自我调节体温,在保护期出现严重的低温,而这种体温变化对MCAO模型后病理结果有显著的影响,是损伤了下丘脑体温调节中 枢所致。

2.常见问题及解决方法

•梗死面积太小

在该模型中,选择截断大脑中动脉主干血流的部分十分重要。实践经验认为只有在鼻裂间隙正上段部位的血流阻断才能得到相对合适的梗死范围。

•损伤脑组织或出血

在手术阻断大脑中动脉主干时,电凝或结扎该血管都很容易造成邻近此血管的脑组织损伤,如果电凝不到位或结扎过于用力,或手术操作粗暴,都极易损伤大脑中动脉主干,从而导致大出血,使手术失败。

 

*以上内容部分源自《实验卒中模型方法学》

书号:ISBN 978-7-313-21776-9

 

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生物3D打印应用 | 体外骨骼肌药筛模型

背景

骨骼肌作为人体内最丰富的组织器官,在人体各处均有身影,重量更是占到了人体的20 – 50%。得益于丰富的骨骼肌,我们能够顺利完成各种动作,成为“动”物。正因为骨骼肌如此重要,与之相对的疾病——肌肉萎缩对于生活的影响也十分严重。同时,缺乏有效的医疗药物也让该类疾病变得十分棘手。药物开发正在进行,然而现行的开发过程费用高、时间久、成功率低,使得患者不能心理上难以承受长期且不稳定的研发等待。因此为了提高临床前的药物筛选效率,3D微生理系统(Micro-physiology systems,MPS)——一种在培养皿上模拟人体生理和疾病效果的技术——逐渐被科研人员所重视。Angela Alave Reyes-Furrer等人便是在此技术上,通过生物3D打印的方式,在体外构建骨骼肌模型,希望能够用于药物筛选。


方法

作者使用瑞士regenHU生物3D打印机3DDiscovery的电磁阀喷墨打印头完成主要的打印工作。相比于经典的挤压打印方式,微型电磁阀喷墨能够有效减少打印时的剪切力,提高细胞存活率。因使用的基质胶(Matrigel)具有低温流动,高温凝固的特性,因而在打印机上搭配了水循环制冷系统,确保打印材料在低温(<10℃)环境下喷出。使用的生物墨水分散有原代人肌肉前体细胞,打印后培养一周形成可收缩、有纹理的肌纤维,即获得了体外骨骼肌模型。期间可观察到模型体积缩小,表明肌肉细胞产生拉力(图1)。

图1 打印后细胞分化过程

结果

作者主要进行了刺激反应和收缩力两方面的测试。

对于刺激反应,作者给予肌肉模型单次电刺激,模型产生了相应的抽搐收缩(图2)。为了更真实地模拟肌肉工作,作者将单次刺激转为电脉冲系统(Electrical pulse stimulation,EPS),给予连续3 h的脉冲刺激,证实了白细胞介素-6肌因子(Interleukin-6 myokine)的表达和蛋白激酶B肥大通路(AKT hypertrophy pathway)的激活(图3)。

图2 肌肉收到刺激后收缩

图3 EPS诱导(+)的模型AKT肥大通路激活和白细胞介素-6表达于第12(d12)、16(d16)、19(d19)天的情况与控制组(-)对比:a)Thr308磷酸化比例;b)Ser473磷酸化比例;c)白细胞介素-6基因表达。统计方法:未配对t检验,*p < 0.05,**p < 0.01,***p < 0.001。


对于收缩力,作者从刺激次数、电流大小、持续时间等方面进行了考察。分别在25 Hz、300 mA、2 ms下获得较大的收缩力值(图4)。随后的进一步实验则添加了常见的肌肉收缩促进剂(Caffeine)和肌钙蛋白激活剂Tirasemtiv(Troponin C activator),发现均能提升肌肉的收缩力(图5)。

图4 电流大小(a)、刺激次数(b)、持续时间(c)对收缩力的影响

图5 Caffeine(左)和Tirasemtiv(右)对于肌肉收缩力的提升。统计方法:未配对t检验,****p < 0.0001。


小    结

作者Angela Alave Reyes-Furrer等人首次在体外使用微生理系统重现肌肉刺激药物对于运动和收缩力地提升,这一技术非常适合于临床前的药物筛选,期待其应用于新型药物开发以医疗肌肉萎缩。

 

参考文献

[1] Alave Reyes-Furrer, A., De Andrade, S., Bachmann, D. et al. Matrigel 3D bioprinting of contractile human skeletal muscle models recapitulating exercise and pharmacological responses. Commun Biol 4, 1183 (2021). https://doi.org/10.1038/s42003-021-02691-0

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技术干货 | 二血管阻塞慢性脑缺血模型的制作

二血管阻塞慢性脑缺血模型

本文介绍模拟慢性脑血流低灌注所致病理生理改变及认知障碍的啮齿类动物模型,包括大鼠双侧颈总动脉结扎和小鼠双侧颈总动脉狭窄模型。其中,大鼠双侧颈总动脉结扎模型通过结扎大鼠双侧颈总动脉实现,小鼠双侧颈总动脉狭窄通过在小鼠的双侧颈总动脉植入钢制线圈实现。结扎大鼠双侧颈总动脉造成脑血流的下降并能较好模拟慢性缺血所致的病理改变,操作简单、重复性好、死亡率低,被广泛用于慢性脑缺血的研究。该模型可造成脱髓鞘改变、轴突丢失、胶质细胞增生等白质损伤的病理改变。

此外,将结扎大鼠双侧颈总动脉与降低平均动脉压(降至50mmHg)结合,并在缺血10~30min后重新恢复血供,可用于模拟前脑缺血。该模型可引起脑内易感脑区神经元的选择性、延迟性死亡,包括新皮质、海马CA1区的锥体神经元以及尾侧壳核。其中,海马神经元损伤与记忆受损及认知障碍密切相关。该模型所致的神经元选择性损伤可通过组织学和行为学检测方法进行评估。二血管结扎模型手术步骤简单、再灌注操作容易,故较四血管结扎模型更具优势。

一、动物选择

大鼠

  • 在建立大鼠二血管结扎的动物模型时,必须考虑动物的品系、性别以及年龄。由于雌激素对缺血结果有影响,通常选用雄性大鼠。在二血管结扎的动物模型中,最常用的动物是250~300g的雄性 Wistar大鼠。Sprague-Dawley(SD)大鼠和其他品系的大鼠亦可用于本模型的制作。

小鼠

  • 常采用雄性C57BI/6小鼠,体重为24-30g。此外,沙鼠是较为常用的品系。由于转基因和基因敲除小鼠大多来源于C57BI/6品系,为了研究基因在慢性脑缺血病理生理机制中发挥的作用,故目前多用C57BI/6小鼠制作该动物模型。

二、制作步骤

1.大鼠手术操作步骤

  • 所有操作均在无菌条件下进行。手术人员应戴口罩和无菌手套,穿无菌隔离衣。术前所有手术器械均应灭菌且在手术过程中存放在无菌溶液中,如恶霉灵溶液。

                                                        大鼠二血管结扎模型操作步骤

(a)大鼠头颈部血管及结扎部位示意图;

(b)动物呈仰卧位;

(c)颈部正中切口,暴露气管和双侧颈总动脉,用眼科镊分离并挑起颈总动脉;

(d)暴露一侧颈总动脉,将一根外科丝缝线结扎颈总动脉用同样的方法分离并结扎另一侧颈总动脉


(1)将大鼠放入麻醉箱中,用含2%异氟醚的70%氧化亚氮和30%氧气的混合气体以5L/min的氧气流速进行麻醉诱导,3~5min后,大鼠进入麻醉状态,之后以1L/min的氧气流速进行维持。

(2)术前褪毛,聚维酮碘常规消毒手术区域。

(3)为了控制平均动脉压、动脉血气量和血糖含量,应同时行尾动脉插管。把2根电极通过小的皮肤切口插入双侧颞肌,以获取脑电图。在整个实验中,平均动脉血压和脑电图的获取依赖动力实验系统。

(4)通过尾动脉抽取动脉血,运用动脉血气体分析仪和血浆葡萄糖测定仪,对血气和血糖含量进行测定。

(5)在缺血前15min和缺血后15min对动脉血气和血糖含量进行测定,在整个实验过程中血液气体含量都保持在正常的生理范围内。

(6)在大鼠腹侧颈部皮肤正中线处做一个切口,小心分离两侧的颈总动脉和周围组织以及迷走神经。

(7)把直肠温度探测器插入到直肠中监测体温。热电耦33G温度探测器植入颞肌,监测头部温度。在动物身体和头部上方的热光源的帮助下,身体和头部温度在整个手术过程中保持在(37±0.2)℃。

(8)当所有的准备工作已经完成时,异氟醚的浓度保持在1%。

(9)在缺血前15min,监测血压中的气体含量,平均动脉血压、脑电图、直肠和头部温度,并且保持在正常的生理范围内。

(10)将两侧颈总动脉通过外科丝缝线5-0结扎以诱导脑血流低灌注。

(11)缝合皮肤,结束麻醉过程。大鼠仍然需要进行70%氧化亚氮和30%氧气的混合气体辅助呼吸,并且保持颞肌和直肠的温度在37℃,直到它从麻醉状态清醒过来,此过程通常需要30~60min。移除头部和直肠温度探测器后,把大鼠放回到其原来的笼子。

(12)密切监控大鼠呼吸,直到呼吸恢复平稳。1~2h后,大鼠可以转移至动物房,常规供应食物和水。

(13)颈总动脉闭塞分步法:为避免脑血流量突然出现相对严重的下降,可按以下步骤逐步闭塞颈总动脉。大鼠用异氟醚麻醉,颈腹正中切口。暴露左侧颈总动脉,与迷走神经轻轻分离,用三条结扎线(2-0)闭塞。1周后,做一个新的切口,右颈动脉同样被阻塞。

2.小鼠手术操作步骤

  • 由于小鼠不能结扎双侧颈总动脉,在小鼠腹侧颈部皮肤正中线处作一个切口,手术显微镜下小心分离两侧的颈总动脉和周围组织以及迷走神经。用内径0.18~0.22mm、长度2.5mm的特制钢制微线圈分别缠绕在双侧颈总动脉分叉部的近心端以诱导脑血流低灌注。缝合皮肤,结束麻醉过程。小鼠仍然需要进行70%/30%的氧化亚氮/氧气辅助呼吸,并且保持颞肌和直肠温度在37℃,直到它从麻醉状态清醒过来,此过程通常需要30~60min。密切监控小鼠呼吸,直到呼吸恢复平稳。30~60min后,小鼠可以放回笼中,常规供应食物和水。因小鼠的Wlls环后交通动脉常缺如,同时结扎双侧颈总动脉,因椎基底动脉系统血流不能代偿颈动脉系统脑血流的剧烈下降,至脑组织缺血缺氧,极易造成动物的迅速死亡。

                                                            小鼠二血管狭窄模型操作步骤

(a)小鼠头颈部血管及钢制微线圈置入部位示意图;

(b)钢制微线圈实物图;

(c)颈部正中切口暴露气管和右侧颈总动脉,用眼科镊分离并挑起右侧颈总动脉将钢制微线圈缠绕在颈总动脉分叉部的近心端;

(d)显微镜下

(e)图的放大图,箭头所指即钢制微线圈

三、注意事项及常见问题解答

1.注意事项

  • 以下要点对于二血管结扎的慢性脑缺血模型组织损伤的重复性非常重要:

  1. 在手术过程中,直肠和大脑的温度必须控制在(37±0.2)℃。大脑的温度尤其重要,因为没有血供会引起大脑温度的下降;而大脑温度的微小变化对于缺血引起的组织学损伤会产生显著的影响。

  2. 手术前夜对小鼠禁食以维持血糖水平的稳定同样非常重要。卒中前高水平血糖通常会引起更加严重的神经元损伤。

2.常见问题及解决方法

  • 死亡大部分是由于术后并发症所导致。颈总动脉和迷走神经分离不清,误伤迷走神经导致动物呼吸困难。手术时间过长和手术过程中的不仔细同样会引起功能修复困难。此外,过度麻醉会引起动物在手术时死亡(如何让动物实验安全平稳进行,点击查看解决方案)。因此,熟练操作,仔细分离颈总动脉是提高生存率的重要因素。


*以上内容部分源自《实验卒中模型方法学》

书号:ISBN 978-7-313-21776-9


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