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青霉素效价测定实验中引起误差的步骤有哪些

dhg7316146bj 2017-05-31 20:41:15 753  浏览
  • 青霉素效价测定实验中引起误差的步骤有哪些

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  • 纯白black 2017-06-01 00:00:00
      青霉素生产工艺过程   一、青霉素的发酵工艺过程   1、工艺流程   (1)丝状菌三级发酵工艺流程   冷冻管(25°C,孢子培养,7天)——斜面母瓶(25°C,孢子培养,7天)——大米孢子(26°C,种子培养56h,1:1.5vvm)——一级种子培养液(27°C,种子培养,24h,1:1.5vvm)——二级种子培养液(27~26°C,发酵,7天,1:0.95vvm)——发酵液。   (2)球状菌二级发酵工艺流程   冷冻管(25°C,孢子培养,6~8天)——亲米(25°C,孢子培养,8~10天)——生产米(28°C,孢子培养,56~60h,1:1.5vvm)——种子培养液(26~25-24°C,发酵,7天,1:0.8vvm)——发酵液。   2、工艺控制   (1)影响发酵产率的因素   基质浓度 在分批发酵中,常常因为前期基质量浓度过高,对生物合成酶系产生阻遏(或YZ)或对菌丝生长产生YZ(如葡萄糖和钱的阻遏或YZ , 的生长YZ), 而后期基质浓度低限制了菌丝生长和产物合成 , 为了避免这一现象 , 在青霉素发酵中通常采用补料分批操作法 , 即对容易产生阻遏、YZ和限制作用的基质进行缓慢流加以维持一定的Z适浓度。这里必须特别注意的是葡萄糖的流加 , 因为即使是超出Z适浓度范围较小的波动 , 都将引起严重的阻遏或限制 , 使生物合成速度减慢或停止。目前 , 糖浓度的检测尚难在线进 行 , 故葡萄糖的流加不是依据糖浓度控制 , 而是间接根据pH 值、溶氧或 C02 释放率予以调节。   (2)温度 青霉素发酵的Z适温度随所用菌株的不同可能稍有差别 , 但一般认为应在25 °C 左右。温度过高将明显降低发酵产率 , 同时增加葡萄糖的维持消耗 , 降低葡萄糖至青霉素的转化率。对菌丝生长和青霉素合成来说 , Z适温度不是一样的, 一般前者略高于后者, 故有的发酵过程在菌丝生长阶段采用较高的温度,以缩短生长时间, 到达生产阶段后便适当降低温度 , 以利于青霉素的合成。   (3) pH 值 青霉素发酵的Z适 pH 值一般认为在 6. 5 左右 , 有时也可以略高或略低一些 , 但应尽量避免 pH 值超过7.0, 因为青霉素在碱性条件下不稳定, 容易加速其水解。在缓冲能力较弱的培养基中, pH 值的变化是葡萄糖流加速度高低的反映。过高的流加速率造成酸性中间产物的积累使 pH 值降低; 过低的加糖速率不足以中和蛋白质代谢产生的氨或其他生理碱性物质代谢产生的碱性化合物而引起 pH 值上升。   (4)溶氧 对于好氧的青霉素发酵来说 , 溶氧浓度是影响发酵过程的一个重要因素。当溶氧浓度降到 30% 饱和度以下时, 青霉素产率急剧下降, 低于 10% 饱和度时, 则造成不可逆的损害。溶氧浓度过高 , 说明菌丝生长不良或加糖率过低, 造成呼吸强度下降, 同样影响生产能力的发挥。溶氧浓度是氧传递和氧消耗的一个动态平衡点, 而氧消耗与碳能源消耗成正比, 故溶氧浓度也可作为葡萄糖流加控制的一个参考指标。   (5)菌丝浓度 发酵过程中必须控制菌丝浓度不超过临界菌体浓度, 从而使氧传递速率与氧消耗速率在某一溶氧水平上达到平衡。青霉素发酵的临界菌体浓度随菌株的呼吸强度 (取决于维持因数的大小, 维持因数越大,呼吸强度越高) 、发酵通气与搅拌能力及发酵的流变学性质而异。呼吸强度低的菌株降低发酵中氧的消耗速率,而通气与搅拌能力强的发酵罐及黏低的发酵液使发酵中的传氧速率上升, 从而提高临界菌体浓度。   (6)菌丝生长速度 用恒化器进行的发酵试验证明,在葡萄糖限制生长的条件下,青霉素比生产速率与产生菌菌丝的比生长速率之间呈一定关系。当比生长速率低于0.015h-1时,比生产速率与比生长速率成正比, 当比生长速率高于 O. 015h-1时, 比生产速率与比生长速率无关 D 因此, 要在发酵过程中达到并维持Z大比生产速率, 必须使比生长速率不低0.015h-1 。这一比生长速率称为 临界比生长速率。对于分批补料发酵的生产阶段来说, 维持0.015h斗的临界比生长速率意味着每 46h 就要使菌丝浓度或发酵液体积加倍, 这在实际工业生产中是很难实现的。事实上 , 青霉素工业发酵生产阶段控制的比生长速率要比这一理论临界值低得多, 却仍然能达到很高的比生产速率。这是由于工业上采用的补料分批发酵过程不断有部分菌丝自溶, 抵消了一部分生长, 故虽然表观比生长速率低, 但真比生长速率却要高一些。   (7)菌丝形态 在长期的菌株改良中 , 青霉素产生菌在沉没培养中分化为主要呈丝状生长和结球生长两种形态。前者由于所有菌丝体都能充分和发酵液中的基质及氧接触, 故一般比生产速率较高; 后者则由于发酵液黏度显著降低, 使气-液两相间氧的传递速率大大提高, 从而允许更多的菌丝生长 (即临界菌体浓度较高), 发酵罐体积产率甚至高于前者。   在丝状菌发酵中, 控制菌丝形态使其保持适当的分支和长度, 并避免结球 , 是获得高产的关键要素之一。而在球状菌发酵中, 使菌丝球保持适当大小和松紧 , 并尽量减少游离菌丝的含量, 也是充分发挥其生产能力的关键素之一。这种形态的控制与糖和氮源的流加状况及速率、搅拌的剪切强度及比生长速率密切相关。   3、 工艺控制要点   (1)种子质量的控制 丝状菌的生产种子是由保藏在低温的冷冻安瓿管经甘油、葡萄糖、蛋白胨斜面移植到小米固体上,25 °C 培养 7 天, 真空干燥并以这种形式保存备用。生产时它按一定的接种量移种到含有葡萄糖、玉米浆、尿素为主的种子罐内 ,26 °C 培养 56h 左右, 菌丝浓度达6%-8%, 菌丝形态正常, 按 10%-15%的接种量移人含有花生饼粉、葡萄糖为主的二级种子罐内,27°C 培养 24h, 菌丝体积 10%-12%, 形态正常, 效价在700D/ml左右便可作为发酵种子。   球状菌的生产种子是由冷冻管子孢子经混有O. 5% -1. 0 %玉米浆的三角瓶培养原始亲米孢子, 然后再移人罗氏瓶培养生产大米抱子 (又称生产米), 亲米和生产米均为25 °C静置培养, 需经常观察生长发育情况在培养到 3-4 天, 大米表面长出明显小集落时要振摇均匀, 使菌丝在大米表面能均匀生长, 待10 天左右形成绿色孢子即可收获。亲米成熟接人生产米后也要经过激烈振荡才可放置恒温培养, 生产米的孢子量要求每粒米300万只以上。亲米、生产米子孢子都需保存在 5 °C冰箱内。   工艺要求将新鲜的生产米 (指收获后的孢瓶在10天以内使用) 接人含有花生饼粉、玉米胚芽粉、葡萄糖、饴糖为主的种子罐内,28 °C 培养 50-60h当pH 值由6. 0-6. 5 下降至 5.5-5. 0, 菌丝呈菊花团状,平均直径在 100- 130μm, 每毫升的球数为 6万 -8万只, 沉降率在 85% 以上, 即可根据发酵罐球数控制在 8000-11000只/ml 范围的要求, 计算移种体积, 然后接入发酵罐, 多余的种子液弃去。球状菌以新鲜孢子为佳, 其生产水平优于真空干燥的孢子,能使青霉素发酵单位的罐批差异减少。   (2)培养基成分的控制   a. 碳源 产黄青霉菌可利用的碳源有乳糖、蕉糖、葡萄糖等。目前生产上普遍采用的是淀粉水解糖、糖化液 (DE 值 50% 以上) 进行流加。   b. 氮源 氮源常选用玉米浆、精制棉籽饼粉、麸皮,并补加无机氮源(硫酸氨、氨水或尿素)。   c. 前体 生物合成含有苄基基团的青霉素 G, 需在发酵液中加人前体。前体可用、苯乙酰胺, 一次加入量不大于0.1%, 并采用多次加入, 以防止前体对青霉素的毒害。   d. 无机盐加人的无机盐包括硫、磷、钙、镁、钾等, 且用量要适度。另外, 由于铁离子对青霉菌有毒害作用, 必须严格控制铁离子的浓度, 一般控制在30 μg/ml 。   (3)发酵培养的控制   a. 加糖控制 加糖量的控制是根据残糖量及发酵过程中的 pH 值确定 , Z好是根据排气中CO2 量及 O2 量来控制, 一般在残糖降至 0.6% 左右, pH 值上升时开始加糖。   b. 补氮及加前体 补氮是指加硫酸铵、氨水或尿素, 使发酵液氨氮控制在 O. 01%-0.05%,补前体以使发酵液中残存苯乙酰胺浓度为 0.05%-0.08% 。   c. pH 值控制 对pH 值的要求视不同菌种而异, 一般为 pH 6.4-6.8, 可以补加葡萄 糖来控制。目前一般采用加酸或加碱控制pH值。 d. 温度控制 前期 2 5- 2 6 °C, 后期 23 °C, 以减少后期发酵液中青霉素的降解破坏。e. 溶解氧的控制 一般要求发酵中溶解氧量不低于饱和溶解氧的30% 。通风比一般为1 : 0. 8L/(L • min), 搅拌转速在发酵各阶段应根据需要而调整。   f. 泡沫的控制 在发酵过程中产生大量泡沫, 可以用天然油脂, 如豆油、玉米油等或用化学合成消泡剂 " 泡敌 " 来消泡, 应当控制其用量并要少量多次加入, 尤其在发酵前期不宜多用, 否则会影响菌体的呼吸代谢   g. 发酵液质量控制 生产上按规定时间从发酵罐中取样 , 用显微镜观察菌丝形态变化来控制发酵。生产上惯称" 镜检 ",根据" 镜检 "中菌丝形变化和代谢变化的其他指标调节发酵温度, 通过追加糖或补加前体等各种措施来延长发酵时间, 以获得Z多青霉素。当菌丝中空泡扩大、增多及延伸, 并出现个别自溶细胞, 这表示菌丝趋向衰老, 青霉素分泌逐渐停止, 菌丝形态上即将进入自溶期, 在此时期由于茵丝自溶, 游离氨释放, pH 值上升, 导致青霉素产量下降, 使色素、溶解和胶状杂质增多, 并使发酵液变蒙古稠, 增加下一步提纯时过滤的困难。因此, 生产上根据" 镜检 "判断, 在自溶期即将来临之际, 迅速停止发酵, 立刻放罐, 将发酵液迅速送往提炼工段。

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教你两步完成肝素效价的测定

精简版

我们提供给您符合中国药典生物检定法要求的 4.4 法分析模板,第 一步将模板导入 SoftMax Pro 7 软件,第二步点击 Read 进行板测读,随后平行线性拟合、方差分析和可靠性检验结果、供试品效价及其可信限全部自动计算出来。


肝素及其效价测定方法介绍

肝素首先从肝脏发现而得名,它也存在于肺、血管壁、肠粘膜等组织中,是一种由动物结缔组织的肥大细胞合成的粘多糖,是由二种多糖交替连接而成的多聚体。它是一种天然的抗凝血物质,在体内外都有抗凝血作用,临床上常用其钠盐或钙盐。肝素钠或肝素钙注射液主要是从猪或牛的肠粘膜中提取的硫酸氨基葡聚糖的钠盐或钙盐,作为迅速达到抗凝作用的首 选药物,被广泛用于血栓栓塞性疾病、心肌梗死、心血管手术、心脏导管检查、体外循环、血液透析等。随着药理学及临床医学的进展,肝素的应用不断扩大。


肝素类产品的效价不能用化学或物理的方法进行确切测定,只能采用生物检定法测定,即利用药物对生物体的作用并与标准品加以比较以测定其效价和生物活性的一种方法。目前体外的抗凝活性实验主要有血浆法和生色底物法,血浆法虽然可以全面衡量肝素的抗凝活性,却很难标准化;生色底物法测定肝素钠的抗 IIa 因子和 Xa 因子活性虽然不能完全反映肝素钠的活性,但国际上通常采用这种方法来确定肝素钠的效价。欧洲药典 5.0 版和我国药典均采用该方法,美国药典从 2009 年开始采用生色抗 IIa 因子测定法代替此前药典中的羊血浆法测定肝素效价。生色底物法 最 大的优点是它在效价测定中的高度专一性,能够识别出此前药典中血浆法不能识别的肝素相似性潜在药物,并且酶标仪的使用使常规测定自动化和标准化。


仪器型号

  • SpectraMax M2e 多功能微孔板读板机

  • SpectraMax M5e 多功能微孔板读板机

  • SpectraMax i3x 多功能微孔板读板机

  • SpectraMax iD3 多功能微孔板读板机


生色底物法的原理是通过微量显色法比较肝素钠标准品 S 与供试品 T 抗 IIa 因子和 Xa 因子的活性,以测定供试品的效价。效价是某种药物达到一定效应时所需的剂量,产生相同效应药物的剂量比较时,所需剂量越小,药物的效价就越高,反之效价就低。在人或动物体内,发生凝血作用的主要是凝血酶,低分子肝素在人体内与抗凝血酶形成络合物,然后抑 制凝血酶(IIa 因子或 Xa 因子)的活性,达到抗凝血的作用,剩余未被抑 制的 IIa 因子或 Xa 因子与生色底物作用显色,使用酶标仪在 405nm 波长处读取吸光度,终溶液的吸光度值与低分子肝素的效价成反比。以吸光度为纵坐标,标准品系列溶液(或供试品系列溶液)浓度的对数值为横坐标分别作线性回归,按生物检定统计法(通则 1431)中的量反应平行线原理 4.4 法实验设计,计算效价及实验误差,药典要求可信限率(FL%)不得大于 10 %。


使用 SoftMax Pro 7 软件进行肝素效价测定

生物检定统计法中涉及到的 F 检验分析方法的推算比较复杂,大多数酶标仪的软件是无法完成这些计算的,但是,Molecular Devices 公司的酶标仪软件 SoftMax Pro 7 具备强大的函数编写能力,能够帮助实验人员完成药典中要求的生物检定统计法的所有分析方法,包括量反应平行线测定法和四参数回归计算法。下面小编以一组实验数据来详细说明,在 SoftMax Pro 7 软件中如何进行肝素生物效价的测定,并将方差分析和和测定结果与 BS2000 软件进行比较。


加样原则


为了减小实验系统操作误差,实验人员应该按照均衡分配各样品在 96 孔微孔板中的不同位置。例如在一块 96 孔微孔板上分配一组标准品溶液 S1~S4 和一组供试品溶液 T1~T4,可以采用 STTS 的样品排列方式(见图 1)。操作熟练的实验人员可以选择同一次反应内测定多批供试品的效价,同时测定两批供试品(A 和 B)可采用 SABBAS 的排列方式;依次类推,同时测定三批供试品(A、B 和 C)可采用 SABCCBAS 的排列方式(见图 2)。



图 1 一组标准品溶液和一组供试品溶液的加样顺序



图 2 一组标准品溶液和三组供试品溶液的加样顺序


实验数据测读

在 SoftMax Pro 7 软件中进行相应排列方式的板布局设置,并输入标准品系列溶液和供试品系列溶液的剂量。本次实验只有一组标准品溶液和一组供试品溶液,S 和 T 采用同等剂量稀释,最 大剂量是 0.049 IU/ml,高低剂量剂间比是 1.4,然后在 405 nm 波长下进行读数,稀释剂量和检测结果如图 3 所示。



图 3 标准品 S 溶液和供试品 T 溶液的剂量(左)及酶标仪的检测结果(右)


平行线性拟合

当标准品 S 和供试品 T 的对数剂量和反应关系的两条直线相互平行时,供试品和标准品的活性组分才是相同的,进而才能计算 S 和 T 的等反应剂量,从而对比出供试品的效价 Pt,所以曲线的平行性分析是生物效价测定的前提。在 SoftMaxPro 软件中,以对数剂量作为横坐标,吸光度值作为纵坐标,对 S 和 T 进行平行线性拟合(即线性约束模型拟合),两条直线强制变为平行,S 和 T 拟合方程的 B 参数(代表斜率)的估计值是相同的,仅 A 参数(代表水平截距)的估计值不同。在95% 的置信水平下,软件自动计算出 F 检验概率值(F Prob),见图 4 红框所示,F Prob > 0.05,表明两条直线是平行的,反之两条直线是不平行的。



图 4 S 和 T 的平行线性拟合。红框中是平行性分析自动计算得出的 F 检验概率值,此值大于 0.05,表明两条直线是平行的。


方差分析及可靠性检验结果

按照药典量反应平行线测定法中方差分析的要求,将总变异进行分解:总变异、剂间变异、区组间变异(随机区组设计)和误差变异,再通过对剂间变异的分析,以检验标准品和供试品的对数剂量和反应的关系是否显著偏离平行直线。4.4 法的剂间变异被分解为以下 5 个变异项:试品间变异、回归变异、偏离平行变异、二次曲线变异和反向二次曲线变异。药典列出了各个变异项及其自由度的推算公式,我们将这些公式编辑到 SoftMax Pro 7 软件中,上述实验检测数据的方差分析和可靠性检验结果将会被计算出来(见图 5 上)。小编将上述实验检测数据手动输入 BS2000 软件,需要注意的是,输入数据时应按照剂量递增的顺序依次输入吸光度值,供试品的标示效价 At 为 5000 IU/ml,接着选择数据不转换和完全随机,最 后得到方差分析结果(见图 5 下)。通过比较,两个软件获得的可靠性检验结果是一致的。




图 5 SoftMax Pro 7 软件可靠性检验结果(上)和 BS2000 软件可靠性检验结果(下)


效价和可信限计算

根据 F 检验的统计分析结果,如果符合药典中可靠性测验结果判定条件,那么实验结果被认为是可靠和有效的。只有实验结果是有效的,方可按等反应剂量比的原则,计算供试品的相对效价 R 和效价 Pt 及其可信限和可信限率,反之,实验结果不成立,R 和 Pt 的结果是无效的。药典对 4.4 法可靠性检验结果的要求是:回归项非常显著(P<0.01),偏离平行、二次曲线和反向二次曲线各项均不显著(P>0.05),满足这些条件才能判定实验结果成立。使用 SoftMax Pro 7 软件对相对效价 R、R 对数的标准误 SM 和供试品效价 Pt 及其可信限和可信限率进行计算,结果见图 6 上,BS2000 软件的计算结果见图 6 下。两个软件计算的效价 Pt 都在客户允许的产品质量标准浮动范围内,可信限率都小于 10%,符合药典对肝素产品的要求。




综上所述,SoftMax Pro 7 软件具备专业的高级统计学分析的能力,不仅支持自由模型和约束模型拟合进行平行性检验,还能完成方差分析和可靠性检验的各种复杂公式的运算,帮助实验人员高效的完成肝素产品生物效价的测定。而且,SoftMaxPro 7 软件是集仪器控制、数据采集及数据分析于一体的合规软件,不需要将读板数据导入或输入到第三方软件进行统计分析,规避了数据安全性和完整性的审查风险。另外,我们已经在 SoftMax Pro 7 软件中建立了符合中国药典生物检定法要求的随机区组设计 3.3 法分析模板、随机设计 3.3 法分析模板、随机设计 4.4 法分析模板、随机设计 4.4 法 - 对数转换分析模板及四参数计算回归法分析模板,如果您有需要,请联系我们。

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