WB实验常见问答集锦
蛋白质印迹实验是学生物的同学们的必备技能,一般需要1~2天的时间,由于过程繁多,结果差异较大,因此也称为是相对定量。那么我们平时做WB的时候会遇到哪些问题呢?
Q1
我的检测结果为什么没有信号或者信号很弱?
可能的原因1:转移蛋白失败或者效率太低
解决方案
1 印迹过程冷凝效果不好导致高温产生了气泡,或者胶/膜变行等情况从而影响了转印效率。
2 优化丙烯酰胺浓度/转移时间/电流。
3 重新检查印迹过程:使用染料对胶和膜染色来检测或使用预染的彩虹marker来帮助监控转印的过程。
可能的原因2:检测系统
解决方案
1 推荐使用斑点印迹系统检测抗原与一抗结果,并筛选合适的浓度。对于一抗的优化,我们推荐起始浓度可以按照1:100、1:500、1:1000、1:5000稀释。
2 低亲和力的一抗:使用无Tween的溶液。
3 独立点膜,验证二抗与发光液预混后曝光,应可清晰看到膜上点,否则请检测二抗效价或发光液效果。
可能的原因3:样本上样量不够,信号过低
解决方案
1 增加上样量或上样前浓缩样本。
2 使用灵敏度更高的检测体系( Amersham ECL prime货号 RPN2232/Amersham ECL Scelect 货号 RPN2235高灵敏度化学发光检测试剂)
3 延长曝光时间(1~2小时)。
可能的原因4:蛋白与膜结合较弱
解决方案
1 转膜缓冲液中的SDS可以提高难溶解蛋白的转印效率,但是也会降低蛋白和膜的结合效率,可以降低SDS含量或者不使用SDS。
2 使用新换的膜以确定正确的水合作用。
Q2
为什么我的条带是空心的?
解决方案:
1 由于蛋白浓度过高导致的底物消耗完毕,建议稀释样本浓度
Q3
背景太高?
可能的原因及解决方案:
1 印迹膜选型不合适或有蛋白污染 :提高封闭试剂浓度或延长封闭时间。换用更低背景的 Protran Premium(PTP) 印迹膜。
2 洗涤不够 :增加洗涤次数,延长洗涤时间。洗涤缓冲液中添加 0.1%(V/V) 的 Tween-20。( 可以在洗涤缓冲液中添加 0.5 M NaCl 或者 0.2% SDS 有利于降低背景 )。
3 封闭不足 :更换封闭试剂,并确保封闭试剂充分溶解。提高封闭试剂浓度和延长封闭时间。
4 二抗浓度太高 :优化抗体浓度
5 封闭试剂与抗体交叉反应,需更换封闭试剂:比如检测磷酸蛋白,建议使用 BSA 代替牛奶作为封闭试剂, 因为牛奶中含有磷酸化的蛋白。
6 一抗、二抗浓度太高 :优化抗体浓度。
7 上样量太大 :降低上样量
Q4
分子量大的蛋白转印效率低
可能原因及解决方案:
1 甲醇浓度太高:降低甲醇浓度至 10%(V/V)以下。
2 蛋白结合时间不够:使用湿转代替半干转。延长转印时间。
3 蛋白凝胶浓度太高:降低凝胶浓度,转印 buffer 中添加 0.1%SDS,促进蛋白溶解。(注意:SDS 可以促进蛋白的溶解,但是也会破坏蛋白与膜的结合)
Q5
分子量小的蛋白转印效率低
可能的原因及解决方案:
1 小蛋白在膜上结合量少:使用蛋白结合能力更强的膜。增大 SDS-PAGE 凝胶浓度。
2 使用小孔径印迹膜,如 0.1 μm 或 0.2 μm Protran 印迹膜。
3 转印 buffer 中残留的 SDS 影响蛋白与膜的结合:转印 buffer 中不要有 SDS。转印前凝胶与转印 buffer 平衡至少 15min 以上。
4 转印 buffer 中甲醇浓度太低:提高甲醇的浓度(15%-20%)
5 蛋白结合时间不够:调低电压,延长转印时间。
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