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新型植物基因组DNA小量提取试剂盒
试剂盒组成成分请在线咨询;
试剂盒介绍:DNA纯化试剂盒提供一个快速有效的DNA纯化方案,广泛地应用于植物组织和真菌。100mg的植物鲜重组织或者20mg干重植物组织都可应用此DNA纯化试剂盒。DNA快速纯化试剂盒可以在1小时内提取植物总DNA(包括线粒体DNA、叶绿体DNA),提取的DNA可以直接用于PCR、Southernblotting等,整个纯化过程不需要酚,CHCl3等有毒试剂,这使得DNA纯化试剂盒很好的用于各种其他样品。纯化得到的DNA用低盐溶液或者水洗脱并应用于下游实验,纯化得到的DNAA260/A280值可达到1.7~1.9,这表明DNA纯度较高,且260nm吸收峰值较好。GX滤膜可以有效的去除一些YZ剂或者其他影响物质,可广泛应用于PCR、RAPD、AFLP、RFLP、SNP等下游实验。自备设备及耗材:1、高速离心机2、液氮3、漩涡振荡器4、EP管5、热水浴或者金属浴6、无水乙醇小量植物总DNA提取(MiniProtocol)1、如果您首次使用植物DNA提取试剂盒,请阅读以上重要注意事项。2、BufferPI-A颜色发黄时不影响正常使用,建议BufferPI-A使用前65℃预热。3、离心环境保持在室温状态(15~25℃)。
开始前准备:1、BufferPI-A使用前65℃加热,BufferPI-C中含有乙醇,使用后盖紧瓶盖,防止乙醇挥发。2、BufferWB在使用前加入乙醇。
提取步骤:1、样品处理:A.材料收集存贮:
收集的新鲜材料如果不能马上使用,请将其放入液氮中冷却,并且Z终保存于-80℃,已经干燥了的材料可
以在室温中存贮。
B.如果条件允许的情况下,尽可能收集新鲜材料,新鲜材料中含有较少的多糖和多酚。
C.当从液体培养基中收集真菌时,首先通过离心的方式,将液体分离并收集到菌体。2、将100mg左右新鲜样品,或者不超过20mg干物质用液氮研磨;3、加入400μlBufferPI-A和4μlRNaseA(10mg/ml),确保研磨样品中不存在块状组织,块状组织比较难裂解,会降低DNA获得率,另外不要将BufferPI-A和RNaseA在使用前进行混合;4、65℃温育10~15min,期间颠倒混匀2~3次,此步用于裂解细胞,如果样品较难裂解,适当延长温育时间,但不超过1小时;5、加入130μlBufferPI-B混匀,并且在冰上冰浴5min(此步用于沉淀多糖、蛋白质);6、推荐步骤:将裂解液离心5min,14000rpm(20000×g);一些植物材料会在此步出现很多粘性物质,这些物质会在接下来的步骤中会剪切DNA,因此,Z理想的状态
是在此步过程中将这些物质移除,离心后,将上清转移至新的离心管中,对于真菌,沉淀物较少,可以忽略此
步骤。7、小心转移上一步所得到的液体到新离心管中;大约450μl液体能够被转移,对于一些物种来说可以少于450μl。8、加入1.5倍体积的BufferPI-C到裂解液中,并混匀;例如:加入400μl裂解液,加入BufferPI-C600μl,如果裂解液体积少于400μl,则按比例减少BufferPI-C的用量,加入BufferPI-C后会有少量沉淀生成,但不影响后续实验。※注:使用BufferPI-C后,盖紧瓶盖,防止乙醇挥发。9、将上步所得液体加入到DNA纯化柱中(大约每次加入量650μl~700μl),大于8000rpm离心1min,将收集的废液遗弃,并重新将收集管套入纯化柱中进行下一步;10、重复步骤9,将剩余液体再加入到纯化柱中,大于8000rpm离心1min,弃掉废液及收集套管;11、将DNA纯化柱放入一个新的收集套管中,加入300μlBufferWB,大于8000rpm离心1min,弃掉废液并将DNA纯化柱重新放入套管中进行下一步;确认BufferWB中已经加入无水乙醇。12、加入500μlBufferWB到DNA纯化柱中,14000rpm(20000×g)离心2min,适当延长离心时间,致膜更加干燥;乙醇的存在对随后的实验有严重影响,因此膜的干燥很重要,离心后确保在进行洗脱前无乙醇的存在,随
后弃掉废液及收集管。
在使用BufferWB漂洗过后,DNA纯化柱膜仅应有轻微的颜色,在离心后,小心移走DNA纯化柱,确保不
与收集管碰到,以确保不会有乙醇影响。13、将DNA纯化柱加入到一个新的离心管中,悬空滴加50-100μlBufferEB到柱膜上,室温温育5min(15~25℃),大于8000rpm离心1min;用>50μlBufferEB洗脱DNA可以提高DNA浓度,但降低了总DNA获得率。14、重复上一步骤。一个新的离心管可以用于收集第二次洗脱的DNA或者使用原来的收集管继续收集DNA。
注:如果次生代谢物及酚含量较多的物种,请向本公司购买BufferYCL,并咨询使用方法。
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