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- 【导读】重组腺病毒构建,扩增及纯化基本技术操作一目的基因的克隆(以pshuttle-CMV质粒为例)1.选择适当酶切位点,进行酶切连接,将目的片段插入pshuttl-CMV质粒多克隆位点。...
重组腺病毒构建,扩增及纯化基本技术操作
一目的基因的克隆(以pshuttle-CMV质粒为例)
1.选择适当酶切位点,进行酶切连接,将目的片段插入pshuttl-CMV质粒多克隆位点。
2.重组质粒鉴定:酶切鉴定或测序。
3.重组质粒扩增,纯化并准备适量含目的基因的穿梭质粒。
4.用PmeI单酶切线性化重组穿梭质粒,电泳鉴定质粒完全被切开。
5.胶回收线性化质粒,以备共转化使用。
二共转化
1大肠杆菌BJ5183电转感受态制备
从新鲜琼脂板上挑取单个BJ5183细菌,接种于LB培养基中,37℃振摇过夜。
接种25ml过夜培养物于500mlLB培养基,37℃振摇,至OD600达到0.4。
迅速将培养物置于冰浴中30min,至充分冷却。
将菌液转移至预冷的离心管中,4℃下以2500r/min离心15min,弃培养液,回收细胞。
以10ml预冷的10%甘油洗涤沉淀,低温离心,共两次。
加约1ml(适量)预冷的10%甘油重悬沉淀,稀释悬液100倍,测量OD600,至稀释浓度为2-3×1010个细胞/ml(1.0OD600约2.5×1010个细胞/ml)。分装,-80℃或液氮保存待用。
2病毒骨架质粒转化大肠杆菌,扩增,纯化。
3将1-5l(约1g)线性化的穿梭质粒及1l(约100ng/l)病毒骨架质粒(如pAdEasy-1)加入至含约40lBJ5183电转感受态的EP管中混匀,冰上冷却。
4将混合物加入电转杯,电击(1250-1500V/mm,5ms)。
5电击结束取出样品,加入1mlSOC或LB培养液,37℃低速振荡40min。
6取适当体积的电击转化细胞液涂于数个卡那霉素抗性平板(25-50mg/ml),37℃培养16-20hr。
7次日挑取平板上长出的菌落(选择Z小的菌落),接种于3ml含25-50mg/ml的LB培养基,37℃培养10-15hr。
8碱裂法提取质粒,0.8%琼脂糖凝胶电泳筛选,大质粒为可能阳性克隆,进一步酶切鉴定。以PacI单酶切,0.8%琼脂糖凝胶电泳如显示出一条大片段(约30kb),及一条小片段(约3.0或4.5kb)(同时可进行其它酶切鉴定),则基本确定为阳性克隆。
9取1-5l阳性质粒转化至DH5α大肠杆菌细胞(BJ5183为recA+,质粒DNA易发生突变,DH5α或JM109,XL1-blue菌株为重组缺陷性菌株,可稳定扩增已鉴定的重组质粒),扩增细菌并纯化质粒。
三重组病毒质粒转导293细胞
1293细胞培养:转导24小时前,以方瓶为例,接种2×106293细胞于25cm2方瓶,使生长密度约50-70%。(也可以使用6孔或96孔板)
2以PacI单酶切重组病毒质粒(转导25cm2方瓶约需4gDNA),完全线性化后,乙醇沉淀,再以20lddH2O溶解。
3脂质体包裹质粒(以Lipofectamine为例):每4gPacI约需20lLipofectamine包裹.质粒及脂质体分别稀释于500l无血清培养基再混合,置于室温下15-30min。
4以无血清培养基轻轻洗涤培养瓶,另加2.5ml无血清培养基,37℃放置10min。
5将Lipofectamine-DNA混合物加入培养瓶,37℃孵箱放置4hr。
64hr后,弃Lipofectamine-DNA混合液,另加入6mlDMEM完全培养基(含10%FCS)。如有大量细胞漂浮,可不弃Lipofectamine-DNA液,加入6mlDMEM完全培养基,37℃孵育过夜,再换液。
7培养过程中观察细胞生长情况。约2周后可观察到细胞病变(CPE)出现(如用pAdTrack-CMV质粒,由于含GFP,可观察到绿色荧光)。
四重组病毒鉴定
1转导10-14d后,收集细胞沉淀,加入2ml灭菌的PBS混悬,冻融细胞,离心后收集上清保存于-80℃。
2取30-50%步骤1中上清,感染50-70%饱和度的25cm2方瓶中293细胞。2-3d后出现明显细胞病变。
3感染后3-5d,当1/3-1/2细胞漂浮时收集病毒。按步骤1收集细胞并准备病毒上清。通过Westernblot和/或PCR鉴定重组腺病毒产生。
4PCR鉴定重组病毒。取5l病毒上清加入10l蛋白酶K,55℃孵育1hr,再煮沸5min,离心后取1-2l作PCR。
五重组病毒扩增,纯化
175cm2方瓶中接种293细胞,至密度达到90%,加入适量病毒上清感染细胞。3-4d后,细胞几乎变圆,且有一半细胞漂浮,则收集所有细胞。约500g转速离心,弃上清。
2以灭菌PBS重悬沉淀,反复冻融4次。4℃下7000g离心5min.病毒纯化至少需要30瓶75cm2方瓶细胞。
3CsCl连续梯度离心纯化:50ml离心管中称量4.4gCsCl,加入8ml病毒裂解上清液,混匀,体积约为10ml。转移至12ml超速离心管(用于SW41转头)中,覆盖约2ml矿物油。平衡后,10℃下32000rpm离心18-24hr,用注射器抽吸离心出的病毒带。
(也可CsCl不连续梯度离心:20ml超速离心管中缓慢加入8mlCsCl1.4(53g+87mL10mMTris-HCl,pH=7.9),上面小心加入6mLCsCl1.2(26.8g+92mL10mMTris-HCl,pH=7.9),再小心加入病毒上清液至体积达到20ml。平衡后,4℃下23000rpm离心90min(SW28转头),用注射器抽吸下层蓝白色病毒带)
4病毒透析去盐:配置透析液(10mMTrispH8.0,2mMMgCl2,5%sucrose),灭菌处理。4℃透析,更换3次透析液,可基本去除CsCl,病毒保存于-80℃。
六病毒滴度测定(TCID50)
1细胞准备:96孔板中接种100l293细胞,每孔细胞数约104个,以2%DMEM培养
2稀释病毒液准备:以2%DMEM将病毒液稀释成8个较高浓度(如10-3-10-10),每个浓度重复10个,每孔加入病毒稀释液100l。另留两排不加病毒液作为阴性对照。37℃下,孵箱培养10天。
310d后观察细胞,记数每排出现CPE的孔数,计算细胞病变率。(如某一浓度各孔细胞全部病变,比率为1,如无细胞病变,则比率为0)。
4计算T=10×101+d(S-0.5)/ml
d=Log10稀释度(如为10倍稀释℃,d=1)
S=各浓℃细胞病变比率之和
实验室重组腺病毒常用质粒:病毒骨架质粒:pAdEasy-1,pAdEasy-2
穿梭质粒:p-Shuttle,p-Shuttle-CMV,pAdTrack,pAdTrack-CMV仪器网-专业分析仪器服务平台,实验室仪器设备交易网,仪器行业专业网络宣传媒体。
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- 2005-02-16 09:23:06
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