获得即用型平板培养基的方法是什么？

即用型平板培养基的结构和功能丧失导致的神经疾病，此类疾病对人类特别是老年人的健康构成了巨大的威胁。过去的临床研究中，人们试图通过化学药物ZL这些疾病，但都没有取得好的效果。然而，近年来生成可以替代受损组织的细胞的再生医学手段，为这些疾病的ZL带来了曙光。因此，神经前体细胞在再生医学和基础研究领域都具有巨大的应用潜力。
目前体外获得神经前体细胞的方法主要有两种。一种是通过诱导多能干细胞（iPS）技术是将体细胞转变为胚胎干细胞样的状态，进而分化产生神经前体细胞。另外一种是细胞转分化技术，可将体细胞在一些谱系特异性转录因子或者小分子化合物的作用下，直接转变产生神经前体细胞。尽管诱导多能干细胞技术和转分化技术为细胞ZL带来了前所未有的曙光，但是这两种方法也都有自己的局限之处。一方面，借助于逆转录病毒、慢病毒等方法，外源病毒基因序列会插入正常细胞的基因组内，引起基因组的不稳定并且具有潜在致瘤风险。另一方面，小分子化合物介导的细胞转分化具有操作相对复杂、花费时间较长及机制不明确等问题。
在这篇文章中，研究人员提供了一种以生长因子为基础的细胞转分化手段，体外从哺乳动物体细胞诱导获得有功能的神经前体细胞。该方法通过利用特定生长因子来调控细胞上下游的信号通路，经过3-4周时间，实现了安全、非整合型的、GX的细胞转分化方法，成功在体外诱导生成神经前体细胞。这种生长因子诱导生成的神经前体细胞与小鼠脑内新生的神经前体细胞相比，无论是在转录调控网络上，还是体内外的分化潜力上都十分相似。相比于现有的诱导神经前体细胞的方法，这一方法一方面规避了传统病毒介导的诱导方法的外源基因插入，免疫原性；即用型平板培养基又通过使用生长因子降低了潜在的致瘤性；另一方面，又极大改善了已有的小分子化合物诱导方法中存在的效率偏低的问题。
之后，研究人员进一步利用高通量测序技术发现这种生长因子诱导生成神经前体细胞是一个渐进变化的过程，包括起始状态，中间状态，成熟状态以及稳定状态。相应的基因调控网络在这两个过程中均由体细胞特异性的调控网络向神经前体细胞特异性的调控网络靠拢。
Ampelopsin27200-12-0蛇葡萄素；二氢杨梅素20mg
Osthol484-12-8蛇床子素20mg
Albiflorin39011-90-0芍药内酯苷20mg
Paeoniflorin23180-57-6芍药苷20mg
Phytolaccagenin1802-12-6商陆皂苷元20mg
EsculentosideA65497-07-6商陆皂苷甲20mg
Cornuside131189-57-6山茱萸新苷20mg
Cornin548-37-8山茱萸苷20mg
即用型平板培养基

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