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怎样用双缩脲法测定蛋白质?

绝代野伊 2013-07-12 02:37:41 517  浏览
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全部评论(2条)

  • 69670386 2013-07-13 00:00:00
    楼主你好: 由于蛋白质分子中含有肽键(一C()_一NH一),与双缩脲结构相似,故也能呈现此反应而生成紫红色配合物,在一定条件下其颜色深浅与蛋白质含量成正比,据此可用吸收光度法来测定蛋白质含量,该配合物的Z大吸收波长为560 nm。双缩脲法灵敏度较低,但操作简单快速,是生物化学领域中测定蛋白质含量的常用方法之一,也可用于豆类、油料、米谷等作物种子及肉类等样品测定。 双缩脲法 1.原理 当脲(尿素)被小心地加热至150~160℃时,可由两个分子间脱去一个氨分子而生成二缩脲(也叫双缩脲)。双缩脲在碱性条件下能与硫酸铜作用生成紫红色的配合物,此反应称为双缩脲反应。 由于蛋白质分子中含有肽键(一C()_一NH一),与双缩脲结构相似,故也能呈现此反应而生成紫红色配合物,在一定条件下其颜色深浅与蛋白质含量成正比,据此可用吸收光度法来测定蛋白质含量,该配合物的Z大吸收波长为560 nm。双缩脲法灵敏度较低,但操作简单快速,是生物化学领域中测定蛋白质含量的常用方法之一,也可用于豆类、油料、米谷等作物种子及肉类等样品测定。 2.主要仪器 ①分光光度计。 ②离心机(4 000 r/min)。 3.试剂 ①10 mol??L叫氢氯化钾。 ②碱性硫酸铜溶液:将lO mI。10 mol??I。叫氢氧化钾和20 mL 25%酒石酸钾钠溶液加到930 mI。蒸馏水中,剧烈搅拌,同时慢慢加人40 mI。4%硫酸铜溶液。配制试剂加入硫酸铜溶液时,必须剧烈搅拌,否则将生成氢氧化铜沉淀。 ③四氯化碳。 4.操作步骤 ①标准曲线的绘制:以采用凯氏定氮法测出蛋白质含量的样品作为标准蛋白质样。按蛋白质含量40 mg、50 mg、60 mg、70 mg、80 mg、90 mg、100 mg、110 mg分别称取混合均匀的标准蛋白质样于8支50 mL纳氏比色管中,然后各加入1 mI。四氯化碳,再用碱性硫酸铜溶液准确稀释至50 mL,振摇10 min,静置1 h,取上层清液离心5 min,取离心分离后的透明液于比色皿中。(更多详细咨询请参考国家标准物质网www.rmhot.com)在560nm波长下以蒸馏水作参比液,调节仪器零点并测定各溶液的吸光度A,以蛋白质的含量为横坐标、吸光度A为纵坐标绘制标准曲线。 ②样品的测定:准确称取样品适量(即使蛋白质含量在40~110 mg)于50 mI。纳氏比色管中,加1 mI。四氯化碳,按上述步骤显色后,在相同条件下测其吸光度A。根据测得的A值在标准曲线上可查得蛋白质质量(mg),进而由此求得蛋白质含量。 5.计算 6.说明 ①蛋白质的种类不同,对发色程度的影响不大。 ②含脂肪高的样品应预先用脱脂后再测定。

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  • 何嫚秋 2013-07-13 00:00:00
    (一)实验原理 双缩脲(NH3CONHCONH3)是两个分子脲经180℃左右加热,放出一个分子氨后得到的产物。在强碱性溶液中,双缩脲与CuSO4形成紫色络合物,称为双缩脲反应。凡具有两个酰胺基或两个直接连接的肽键,或能过一个中间碳原子相连的肽键,这类化合物都有双缩脲反应。 紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比,而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关,故可用来测定蛋白质含量。测定范围为1-10mg蛋白质。干扰这一测定的物质主要有:硫酸铵、Tris缓冲液和某些氨基酸等。 此法的优点是较快速 ,不同的蛋白质产生颜色的深浅相近,以及干扰物质少。主要的缺点是灵敏度差。因此双缩脲法常用于需要快速,但并不需要十分精确的蛋白质测定。 (二)试剂与器材 1. 试剂: (1)标准蛋白质溶液:用标准的结晶牛血清清蛋白(BSA)或标准酪蛋白,配制成10mg/ml的标准蛋白溶液,可用BSA浓度1mg/ml的A280为0.66来校正其纯度。如有需要,标准蛋白质还可预先用微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量,计算出其纯度,再根据其纯度,称量配制成标准蛋白质溶液。牛血清清蛋白用H2O 或0.9%NaCl配制,酪蛋白用0.05N NaOH配制。 (2)双缩脲试剂:称以1.50克硫酸铜(CuSO4&8226;5H2O)和6.0克酒石酸钾钠(KNaC4H4O6&8226;4H2O),用500毫升水溶解,在搅拌下加入300毫升10% NaOH溶液,用水稀释到1升,贮存于塑料瓶中(或内壁涂以石蜡的瓶中)。此试剂可长期保存。若贮存瓶中有黑色沉淀出现,则需要重新配制。 2. 器材: 可见光分光光度计、大试管15支、旋涡混合器等。 (三)操作方法 1. 标准曲线的测定:取12支试管分两组,分别加入0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0毫升的标准蛋白质溶液,用水补足到1毫升,然后加入4毫升双缩脲试剂。充分摇匀后,在室温(20~25℃)下放置30分钟,于540nm处进行比色测定。用未加蛋白质溶液的diyi支试管作为空白对照液。取两组测定的平均值,以蛋白质的含量为横座标,光吸收值为纵座标绘制标准曲线。 2、样品的测定:取2~3个试管,用上述同样的方法,测定未知样品的蛋白质浓度。注意样品浓度不要超过10mg/ml。

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