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Megazyme比色法用低聚糖FAQs(3)
Q:4-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷(o-PNPBG)如何用于检测β-葡萄糖苷酶?
A:4-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷按以下规程用于β-葡萄糖苷酶检测,不过缓冲溶液可以配合受检的酶溶液的pH值进行调整。
所需材料:
缓冲溶液:-0.1M醋酸钠缓冲溶液(pH4.0)。
酶底物溶液:4-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷(10mM)。
称量301毫克的4-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷,加入150ml耐热烧杯中,加入95毫升0.1M的醋酸钠缓冲溶液(pH4.0)。搅拌溶液直至底物完全溶解(大约10分钟)。用0.1M的醋酸钠缓冲溶液(pH4.0)调节体积至100毫升。加入0.02g叠氮钠以防止微生物污染。将溶液储存于一个密闭的Duran瓶中。日常使用时取10毫升加入聚丙烯试管中。注意不要频繁从酶底物储备液中取用。所有容器都应置于4摄氏度下储存。酶制备液:
用GILSON的微量移液器精确将1.0毫升均匀的酶悬浮液转移到一个100毫升的容量瓶中,然后用0.1M的醋酸钠缓冲溶液(pH4.0)定容。接下来按照0.5毫升酶溶液和4.5毫升缓冲液的比例(10倍)稀释酶制备液,混合均匀,重复上述步骤直至获得适合分析的稀释液。上述操作推荐使用Gilson移液器,预设0.5ml,用于转移酶制备液;Eppendorf多道移液器用于转移4.5ml缓冲液(5道设置为2.5毫升,4道设置为2毫升)。
检测过程:
40摄氏度下,预培养置于玻璃试管(16x100mm)中的酶底物溶液(0.2毫升)5分钟
40摄氏度下,预培养酶稀释溶液(约5毫升)5分钟。
严格按时间间隔(大约15秒),往含有0.2毫升底物溶液的试管底部加入0.2毫升酶溶液,剧烈震荡混合试管内容物,然后培养试管(一式四份)10分钟左右。
培养结束前,加入3.0毫升2%的磷酸三钠溶液(pH12.0)终止反应,并剧烈搅拌。
准备反应空白溶液(一式两份),将3.0毫升2%的磷酸三钠溶液(pH12.0)加入0.2毫升底物溶液中,剧烈搅拌。然后加0.2毫升酶溶液,剧烈搅拌。
按以下步骤测量吸光度值(400nm):
-用蒸馏水校正分光光度计的零点
-检测反应空白样相对于水的吸光度,并记录(仅供参考).
-用蒸反应空白样校正分光光度计的零点
-检测所有其它溶液相对于反应空白样的吸光度活性计算公式如下:
1个单位酶活性,是每分钟在Z佳pH和40摄氏度下将1微摩尔PNP底物水解成pNP和底物所需要的酶的数量。
按以下公式进行计算:
Units/mL=(ΔE400/10)×(3.4/0.2)×(1/18.1)×(100/1.0)×稀释体积
=ΔE400×9.39×稀释体积此处:
ΔE400=吸光度(反应)吸光度(空白)
培养时间=10分钟
细胞总体积=3.4毫升
检测等分=0.2毫升
对硝基酚在2%磷酸三钠溶液中的EmM值=18.1
萃取体积=总体积为100毫升的萃取原液中有1.0毫升的酶
稀释体积=萃取原液进一步稀释体积
注意:-对于40Units/ml的β-葡萄糖苷酶溶液来说,进一步稀释“萃取原液”意味着稀释至10倍。
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- 2004-08-20 09:23:04
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