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血球计数板的使用方法

一三四的 2017-04-20 01:28:08 608  浏览
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  • 秋雪川溪子 2017-04-21 00:00:00
    1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的菌数可数为度。 2.取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。 3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘滴入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高),然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。 4.静置片刻,使细胞沉降到计数板上,不再随液体漂移。将血球计数板放置于显微镜的载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。 5.计数时若计数区是由16个中方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的4个中方格(即100小格)的菌数。如果是25个中方格组成的计数区,除数上述四个中方格外,还需数ZY1个中方格的菌数(即80个小格)。为了保证计数的准确性,避免重复计数和漏记,在计数时,对沉降在格线上的细胞的统计应有统一的规定。如菌体位于大方格的双线上,计数时则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。即位于本格上线和左线上的细胞计入本格,本格的下线和右线上的细胞按规定计入相应的格中。见右图:即本格中计数细胞为3个。 6.对于出芽的酵母菌,芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。每个样品重复计数2-3次(每次数值不应相差过大,否则应重新操作),按公式计算出每mL(g)菌悬液所含细胞数量。 7.测数完毕,取下盖玻片,用水将血球计数板冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏网格刻度。洗净后自行晾干或用吹风机吹干,放入盒内保存。

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       但是由于其本身固有设计的简易性和使用过程的复杂性,导致其计数结果会有一个必然的误差。其误差主要来源于人为操作因素:


细胞悬液的混匀

       均匀细胞悬液的准备对计数结果的准确性至关重要。对于某些极易聚团或未能均匀打散的细胞悬液,人工计数时,往往不易识别。


细胞悬液的稀释

       依据大多数实验室的习惯,通常会采取对四个顶角的大格内的细胞进行统计计数,每个大格的细胞一般落在30-50个之间时,计数结果会更加准确。这就意味着,细胞悬液过浓或者是过稀都不利于获得准确的结果。多数情况下,我们需要对悬液进行有效的稀释。


盖玻片的摆放

       据一项研究表明,在计数过程中,盖玻片的位置不准确可造成7.6%的计数差异。


人工计数过程的误差

       一项实验表明,不同操作者之间的计数差异能高达52%,而同一个操作者的计数差异为20%。在计数过程中,往往需要同一个人在相同的条件下进行多次计数以消除误差。(即使这样,也可能会产生20%的误差)


人为计算过程的误差

       通过计数板获取的数据结果,需要通过一系列的计算,从而转化成实际的细胞浓度数据。再乘以细胞原液的稀释倍数(如台盼蓝的稀释等),方能得到所需样品的细胞浓度。计算过程中的误差也会影响到Z终的实验结果。


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