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上海长方光学仪器有限公司

细胞原代培养实验

来源:内容来源于网络 浏览量:556次
【导读】实验方法原理将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖,这一过...

实验方法原理将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖,这一过程称原代培养。因此,较为严格地说是指成功传代之前的培养,此时的细胞保持原有细胞的基本性质,如果是正常细胞,仍然保留二倍体数。但实际上,通常把diyi代至第十代以内的培养细胞统称为原代细胞培养。Z常用的原代培养有组织块培养和分散细胞培养。

实验材料

胎鼠新生鼠

试剂、试剂盒

1640培养基牛血清胰酶Hank’s液碘酒

仪器、耗材

培养箱培养瓶青霉素瓶小玻璃漏斗平皿吸管移液管纱布手术器械血球计数板离心机水浴箱

实验步骤一、实验材料准备

1.Hank’s液配方:KH2PO40.06g,Nacl8.0g,NaHCO30.35g,KCl0.4g,葡萄糖1.0g,Na2HPO4H2O0.06g,加H2O至1000ml。Hank’s液可以高压灭菌。4℃下保存。

二、具体操作


1.将孕鼠或新生小鼠拉颈椎致死,置75%酒精泡2-3秒钟(时间不能过长、以免酒精从口和肛门浸入体内)再用碘酒消毒腹部,取胎鼠带入超净台内(或将新生小鼠在超净台内)解剖取肝脏,置平皿中。

2.用Hank’s液洗涤三次,并剔除脂肪,结缔组织,血液等杂物。

3.用手术剪将肝脏剪成小块(1mm2),再用Hank’s液洗三次,转移至小青霉素瓶中。

4.视组织块量加入5-6倍的0.25%胰酶液,37℃中消化20-40分钟,每隔5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细胞分离。

5.加入3-5ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶YZ剂)。

6.静置5-10分钟,使未分散的组织块下沉,取悬液加入到离心管中。

7.1000rpm,离心10分钟,弃上清液。

8.加入Hank’s液5ml,冲散细胞,再离心一次,弃上清液。

9.加入培养液1-2ml(视细胞量),血球计数板计数。

10.将细胞调整到5×105/ml左右,转移至25ml细胞培养瓶中,37℃下培养。

注意事项


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2004-09-11 09:23:06
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